martes, 30 de octubre de 2012

                             UNIDAD II CULTIVO DE TEJIDOS VEGETALES



2.1 MEDIOS DE CULTIVO

2.1.1 AREAS DEL LABORATORIO DE CULTIVO DE TEJIDOS

Se pueden distinguir 3 areas importantes:

CAMARA DE FLUJO LAMINAR:

Es llamada así por que contiene en su interior un Cabina de Flujo Laminar; es el área mas estéril del Laboratorio, todo lo que ingrese en esta área debe estar debidamente esterilizado (material de vidrio, agua destilada), y el personal deberá entrar con el equipo necesario, es decir, con guantes, tapones para oídos, forro para pies, Mandil limpio y mascarilla quirúrgica.

Esta área deberá ser limpiada después de realizar cualquier trabajo en su interior, para asegurar su condición aséptica.

 

Esta zona debe estar completamente aislada de las otras, se debe evitar que entre el polvo o los insectos.

 AREA DESARROLLO IN VITRO:

Contenido:

  • Repisas de Vidrio de varios pisos
  • Lamparas de tubo fluorescente.
  • Frascos Sembrados.
  • Termometro

Es el área donde se colocara el explante después de la siembra, y donde además se desarrollara durante todas fases del programa. El explante, será colocado sobre repisas de vidrio, con iluminación artificial. Las luces deberán encenderse al empezar el día de trabajo y se apagaran al finalizar la jornada de trabajo. La limpieza es esencial, cuando un frasco se contamina en alguna parte del proceso, el mismo es retirado de la repisa y llevado un lugar despejado para ser eliminado.

 AREA DE TRABAJO:

Contenido:

  • Balanza analitica
  • refrigeradora
  • Autoclave
  • Lavaplatos
  • Cocina

Anaqueles de almacenamiento(para frascos, instrumentos, reactivos y papeleria).

Es un área de transito abierto, en este lugar se recibe, procesa y desinfecta todo (sustrato, medio de cultivo, material), para que entre asépticamente a las cámaras.
 
2.1.1.1 AREAS DE PREPARACION DE MEDIOS DE CULTIVO Y ESTERILIZACION
Los medios de cultivo se pueden preparar en el laboratorio a partir de cada uno de
sus constituyentes básicos, o por simple rehidratación de productos asequibles comercialmente
(medios de cultivo deshidratados). Generalmente se prefiere el uso de
los medios de cultivo deshidratados porque, además de simplificar el trabajo, con
ellos se tiene mayor probabilidad de obtener resultados reproducibles.
Para su preparación se deben tener en cuenta los siguientes aspectos:
Prepararlos sólo a partir de productos que provengan de fabricantes o proveedores
que suministren productos de calidad.
Utilizar agua destilada o desmineralizada con una calidad microbiológica y fisicoquímica
adecuada.
Utilizar materiales de vidrio bien lavados y enjuagados con agua destilada o desmineralizada.
Controlar el tiempo y la temperatura recomendada durante su esterilización. Nunca
se deben exceder las condiciones señaladas por el fabricante.
 2.1.1.2 AREA DE ALMACENAMIENTO
Los medios de cultivo deshidratados se deben almacenar en envases sellados bajo
las condiciones que señale el fabricante. Generalmente se almacenan en un lugar
fresco (entre 15 y 25°), con poca humedad y protegidos de la luz solar directa. Nunca
se deben almacenar cerca de autoclaves, hornos, ni otra fuente de calor o vapor.
Los medios de cultivo deshidratados son higroscópicos. Cuando los envases de estos
medios de cultivo deshidratados son abiertos para su uso inicial, se debe tener la
precaución de cerrarlos tan pronto como sea posible y mantenerlos bien cerrados
para prevenir la entrada de humedad. La absorción de agua produce cambios de pH,
formación de grumos, decoloraciones del polvo, etc., lo cual indica que deben ser
descartados porque pueden haber sufrido cambios químicos o estar contaminados.
Una vez que el medio de cultivo ha sido preparado y esterilizado, puede almacenarse
a temperatura ambiente por un periodo máximo de 2 semanas protegido de la luz, o
por periodos mayores a 12 -15ºC. Sin embargo, almacenados bajo refrigeración entre
2 y 8°C se prolonga la vida útil de los mismos, (nunca por debajo de 0ºC porque se
destruye la estructura del gel). Los medios de cultivo se deben mantener en recipientes
bien cerrados para evitar su deshidratación y cuando se usa tapón de algodón, se
debe colocar por encima una envoltura de papel (Craft).
Otro punto importante a tomar en cuenta, es que cada lote de medio de cultivo preparado
debe pasar por un riguroso proceso de control de calidad, en donde se determinan
sus propiedades fisicoquímicas (apariencia, pH, etc.) y microbiológicas (esterilidad
y promoción de crecimiento) verificando que cumplan con los requisitos de
calidad establecidos y por ende demostrar que son aptos para su uso.
 2.1.1.3. AREA DE SIEMBRA ASEPTICA
En esta área se realizan el trabajo de excisión, inoculación y transferencia de los explante a los medios de cultivo. Este trabajo demanda los más altos niveles de limpieza ambiental, se recomienda la instalación de gabinetes de flujo horizontal o vertical de aire filtrado o bajo presión o la construcción de cuartos de transferencia. Sin embargo, ciertas operaciones de inoculación como la excisión y el cultivo de ápices y meristemas en tubos de ensayo de boca angosta, se pueden realizar sobre una mesa limpia, ubicada en un lugar del laboratorio libre de corrientes de aire y de polvo. Los gabinetes de flujo laminar deben ubicarse en lo posible en un lugar alejado de las puertas y con un mínimo de corriente de aire, con el fin de prolongar la vida útil de los filtros.
 Esta area debe de estar limpia, diseñada y construida correctamente para minimizar la contaminación por partículas viables y no viables y mantenerla dentro de límites preestablecidos. Cuando se trabaja con cultivos microbianos, la técnica aséptica se utiliza para prevenir la introducción de organismos adicionales al cultivo. Un ambiente propicio para el desarrollo de microorganismos es el conjunto medio de cultivo – explante, pudiendo destruir tales cultivos; por lo cual es necesario evitar los contaminantes.
 
Área física de 2.4 X 3.6 metros
Aislada con pocas corrientes de aire, alejado de puertas.
Superficies lavables y de fácil desinfección.
Mesones.
Estantería.
 Equipos:
 Cabinas de flujo laminar.
Mechero.
Estereoscopio.
Equipo de disección.
2.1.1.4. AREA DE INCUBACION
En esta área es donde permanecen los medios sembrados con explantes para su desarrollo y crecimiento. El área de incubación debe proporcionar un buen control de la temperatura (20-28ºC) , la iluminación, la cual puede ser variable y la humedad relativa. El área de estar libre de agentes contaminantes para que no intervengan en el crecimiento del cultivo. En esta área se debe controlar la temperatura, para lo cual se puede hacer uso de aparatos de aire acondicionado, para evitar el recalentamiento.
Área de cuarto de crecimiento
Área física de 5.4 X 3.6 metros.
Aislado a temperaturas entre 24 a 29ºC.
Humedad relativa entre 70 a 80%.
16 horas luz por 8 horas de oscuridad


sábado, 20 de octubre de 2012


tarea premio novel



PREMIO NOBEL DE MEDICINA 2012: CÉLULAS MADRE PLURIPOTENCIALES INDUCIDAS

 

Las células madre pluripotentes inducidas (normalmente abreviadas como células iPS, por sus siglas en inglés: "induced Pluripotent Stem" ) son un tipo de células madre con características pluripotenciales (capaces de generar la mayoría de los tejidos) derivadas artificialmente de una célula diana que inicialmente no era pluripotencial. Las células adultas pueden ser reprogramadas y convertirse en células madre pluripotenciales. Son las llamadas células madres pluripotenciales inducidas (células iPS).

Todos partimos de una única célula, el resultado de unir un óvulo y un espermatozoide. Está única célula se va multiplicando y generando células inmaduras que tienen la capacidad de producir todas las distintas células de un organismo, desde neuronas hasta las células de los huesos o la piel. Estas células inmaduras se llaman células madre pluripotenciales. En el pasado se creía que el viaje era en una única dirección: de inmaduras a maduras. Los trabajos de John B. Gurdon y Shinya Yamanaka demostraron que la dirección opuesta también era posible: las células adultas pueden reprogramarse para convertirse en células inmaduras capaces de generar células de cualquier tejido. El descubrimiento les ha valido la concesión del Premio Nobel de Medicina y Fisiología de 2012.

John B. Gurdon en 1962 realizó un experimento determinante. Supuso con razón que en el genoma de una célula adulta sigue existiendo la información para convertirse en cualquier célula. Reemplazó el núcleo del huevo de una rana con el núcleo de una célula del intestino, ya madura. El huevo se desarrolló normalmente y produjo una rana normal. El núcleo de la célula adulta no había perdido la capacidad de generar todo tipo de células y había sido reprogramado al insertarse en un huevo.

En 2006 Shinya Yamanaka, más de 40 años después realizó otro experimento trascendental. Trató de averiguar qué genes hacían que las células madre permanecieran inmaduras. Después de varios intentos encontró que solo 4 genes lo conseguían. Tomaron células del tejido conectivo, fibroblastos, e introdujeron en ellas los genes hallados. Al hacerlo habían reprogramado el fibroblasto maduro en una célula madre pluripotencial inducida. Ahora esta célula podía generar todo tipo de células como neuronas u otros fibroblastos. Una de las ventajas fundamentales de este trabajo es que no es necesario recurrir a embriones para lograr células madre, algo que plantea problemas éticos en determinados ámbitos.

Estos descubrimientos suponen que podemos generar todo tipo de células a partir no solo de células madre embrionarias sino de células maduras. Estas células ayudan a comprender los mecanismo de desarrollo y ofrecen la oportunidad de nuevas terapias médicas.

La genética, ciencia sobresaliente del S. XXI no para de proporcionar avances hacia un mundo mejor.
 
 
 
 


 

 

miércoles, 17 de octubre de 2012

BIOTECNOLOGIA

                                                


TAREA  TABLA DE VOLÚMENES A ESTERILIZAR POR TIEMPO



La esterilización
Un modelo generalmente aceptado de la cinética de la muerte de una población de microorganismos sometidos a una acción letal, es el que establece que su disminución en el tiempo es proporcional a su número:
-dN/dt = KN
Donde
N es el número de microorganismos
T es el tiempo
K es la constante de proporcionalidad o integrando entre:

L (N/N0) = -kt

De donde

N= N0. e -kt = N0. 10-kt

Donde N0

Es el número inicial de microorganismos

k=2,3. K
 

 
 
FIGURA 1.

 



 



 
FIGURA 2





 



 FIGURA 3.





Existen diversos métodos de esterilización: por calentamiento, por radiación de luz, por radiación ionizante o por agentes químicos

 

Como puede observarse, el número de microorganismos en tiempos finitos no es nunca cero. Esto nos conduce a la definición de esterilización de ISO 11139: 2006 (1) como: “Esterilización es el proceso físico o químico que destruye o elimina organismos vivos.” Esta afirmación no puede ser considerada como un absoluto, dado que la acción de la esterilización debe expresarse en términos de probabilidad de supervivencia de una cantidad conocida de un microorganismo especifico. Existen diversos métodos de esterilización: por calentamiento, por radiación de luz, por radiación ionizante o por agentes químicos. Cada uno de ellos tiene unas ventajas e inconvenientes que les hacen más aptos para distintas aplicaciones. Por supuesto, cada uno de ellos, si bien consigue el mismo efecto deseado: la esterilización, utiliza un mecanismo y una variable crítica diferente. En la Tabla I se describen los conceptos teóricos que determinan los sistemas de esterilización térmica y los puntos clave de su diseño.

 

LA ESTERILIZACIÓN EN CONTINUO PRESENTA VARIAS VENTAJAS FRENTE A LA INSTALACIÓN DE ESTERILIZACIÓN EN BATCH DE IGUAL CAPACIDAD

 

El tiempo del ciclo estará determinado por el número inicial de microorganismos y por el SAL, nivel de aseguramiento de la esterilidad deseado. Planteemos un ejemplo práctico, por ejemplo si:

• el valor D a 121 ºC del bacillus stearothermophilus es de 1,7 minutos

• partimos de un bioburden de 1010

• queremos un SAL de 10-3 Para esterilizar el medio se debe someter a una temperatura de 121ºC durante un tiempo de:

t=D*log (carga/SAL) = 1,7*(10+3)= 22,1 minutos

Esto se ilustra en la Tabla II A partir de la tercera definición, podemos establecer la fórmula: F = t x 10(T -121)/z que nos permite calcular el tiempo necesario para conseguir el SAL deseado a otras temperaturas distintas de los famosos 121,1 ºC.

La variación del tiempo de esterilización con la temperatura se ilustra en la Tabla III Si se elige trabajar a 125ºC el tiempo necesario para reducir una contaminación de 1010 microorganismos a 10-3 el tiempo inicial de 22,1 minutos queda reducido a 9 minutos. Existen un par de consideraciones de tipo práctico que es conveniente no olvidar:

• La primera es la importancia de la correcta calibración de la instrumentación de medida y control de la temperatura. En efecto, un error absoluto de 1ºC en la medida (un error relativo cercano al 1%) tiene como consecuencia una variación de la letabilidad próxima al 25%.

• La segunda es la variación de la presión de vapor del agua con la temperatura.

Las figuras IV y V indican los dos modos de esterilización térmica más empleados: la esterilización por lote (batch) y la esterilización en continuo.

En la primera de ellas, esterilización en batch, una vez que se alcanza el volumen

de efluentes deseado, se trasvasa su contenido al tanque de procesamiento, donde se lleva a cabo el calentamiento del líquido por medio del paso de vapor por la del tanque o fluyendo a través de él, por medio de ambos procedimientos. Tambien es posible la utilización de un calentador eléctrico.


 



 

 



 

 


SUBSECRETARÍA DE EDUCACIÓN SUPERIOR
DIRECCIÓN GENERAL DE EDUCACIÓN SUPERIOR TECNOLÓGICA.
INSTITUTO TECNOLOGICO DE CD. ALTAMIRANO